Übersichtsarbeiten - OUP 05/2016

Diagnostische Möglichkeiten der molekularen Histologie für rheumatologische und orthopädische Krankheitsbilder

Die Untersuchung und Objektivierung von Degeneration und Rissbildungen ist ebenso wie der Nachweis von Amyloidablagerungen einschließlich der beschriebenen Proteine mittels MALDI-Imaging auch an Formalin-fixiertem Paraffin-eingebettetem Routinematerial möglich (Abb. 6). Wir haben die Kriterien zur Erstellung eines objektivierten Meniskusbefunds ausführlich beschrieben [27].

Neben der Immunhistochemie sind molekulare Methoden zum RNA- und DNA-Nachweis in die diagnostische Histopathologie rheumatologischer und orthopadischer Krankheitsbilder integriert worden. Neueste Entwicklungen sind proteomische Methoden wie Flüssigkeitschromatografie/ Massenspektrometrie oder MALDI-Imaging-Techniken. Letztgenannte Methode erlaubt nicht nur die Gewinnung eines Massenspektrums und damit die Detektion zahlreicher Moleküle, sondern auch deren räumliche Zuordnung im Gewebe und stellt damit eine Methode der Zukunft der histopathologischen Diagnostik dar.

Interessenkonflikt: Proteopath wurde durch Bruker Daltonik GmbH und SCiLS Lab unterstützt.

Korrespondenzadresse

Prof. Dr. med. Dr. phil. Jörg Kriegsmann

Wissenschaftspark Trier

Max-Planck-Straße 5

54296 Trier

kriegsmann@patho-trier.de

Literatur

1. Sethi S, Vrana JA, Theis JD et al.: Laser microdissection and mass spectrometry-based proteomics aids the diagnosis and typing of renal amyloidosis. Kidney international 2012; 82: 226–34

2. Krenn V, Morawietz L, Perino G, et al.: Revised histopathological consensus classification of joint implant related pathology. Pathology, research and practice 2014; 210: 779–86

3. Kolbel B, Wienert S, Dimitriadis J et al.: [CD15 focus score for diagnostics of periprosthetic joint infections : Neutrophilic granulocytes quantification mode and the development of morphometric software (CD15 quantifier)]. Zeitschrift fur Rheumatologie 2015; 74: 622–30

4. Gallo J, Kolar M, Dendis M et al.: Culture and PCR analysis of joint fluid in the diagnosis of prosthetic joint infection. The new microbiologica 2008; 31: 97–104

5. Kriegsmann J, Hopf T, Jacobs D et al.: [Applications of molecular pathology in the diagnosis of joint infections]. Der Orthopade 2009; 38: 531–8

6. Zmistowski B, Della Valle C, Bauer TW et al.: Diagnosis of periprosthetic joint infection. Journal of orthopaedic research: official publication of the Orthopaedic Research Society 2014; 32 Suppl 1: S98–107

7. Rosey AL, Abachin E, Quesnes G et al.: Development of a broad-range 16S rDNA real-time PCR for the diagnosis of septic arthritis in children. Journal of microbiological methods 2007; 68: 88–93

8. Grif K, Heller I, Prodinger WM, Lechleitner K, Lass-Florl C, Orth D: Improvement of detection of bacterial pathogens in normally sterile body sites with a focus on orthopedic samples by use of a commercial 16S rRNA broad-range PCR and sequence analysis. Journal of clinical microbiology 2012; 50: 2250–4

9. Cazanave C, Greenwood-Quaintance KE, Hanssen AD, Patel R: Corynebacterium prosthetic joint infection. Journal of clinical microbiology 2012; 50: 1518–23

10. Levy O, Iyer S, Atoun E et al.: Propionibacterium acnes: an underestimated etiology in the pathogenesis of osteoarthritis? Journal of shoulder and elbow surgery/American Shoulder and Elbow Surgeons [et al]. 2013; 22: 505–11

11. Birmingham P, Helm JM, Manner PA, Tuan RS: Simulated joint infection assessment by rapid detection of live bacteria with real-time reverse transcription polymerase chain reaction. The Journal of bone and joint surgery American volume 2008; 90: 602–8

12. Gravius S, Randau TM, Casadonte R, Kriegsmann M, Friedrich MJ, Kriegsmann J: Investigation of neutrophilic peptides in periprosthetic tissue by matrix-assisted laser desorption ionisation time-of-flight imaging mass spectrometry. International orthopaedics 2015; 39: 559–67

13. Kriegsmann M, Seeley EH, Schwarting A et al.: MALDI MS imaging as a powerful tool for investigating synovial tissue. Scandinavian journal of rheumatology. 2012; 41: 305–9

14. Knoss P, Knoss M, Otto M, Kriegsmann J, Krukemeyer MG, Krenn V: [Diagnostic spectrum of synovitis]. Zeitschrift fur Rheumatologie 2008; 67: 8, 10–4, 6

15. Townes JM: Reactive arthritis after enteric infections in the United States: the problem of definition. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America 2010; 50: 247–54

16. Carter JD, Gerard HC, Whittum-Hudson JA, Hudson AP: The molecular basis for disease phenotype in chronic Chlamydia-induced arthritis. International journal of clinical rheumatology 2012; 7: 627–40

17. Bowness P: HLA B27 in health and disease: a double-edged sword? Rheumatology 2002; 41: 857–68

18. Peluso R, Di Minno MN, Iervolino S et al.: Enteropathic spondyloarthritis: from diagnosis to treatment. Clinical & developmental immunology. 2013; 2013: 631408

19. Jalava J, Skurnik M, Toivanen A, Toivanen P, Eerola E: Bacterial PCR in the diagnosis of joint infection. Annals of the rheumatic diseases 2001; 60: 287–9

20. Deanehan JK, Kimia AA, Tan Tanny SP et al.: Distinguishing Lyme from septic knee monoarthritis in Lyme disease-endemic areas. Pediatrics 2013; 131: e695–701

21. Gaubitz M, Dressler F, Huppertz HI, Krause A: Kommission Pharmakotherapie der D. [Diagnosis and treatment of Lyme arthritis. Recommendations of the Pharmacotherapy Commission of the Deutsche Gesellschaft fur Rheumatologie (German Society for Rheumatology)]. Zeitschrift fur Rheumatologie 2014; 73: 469–74

22. Nocton JJ, Dressler F, Rutledge BJ, Rys PN, Persing DH, Steere AC: Detection of Borrelia burgdorferi DNA by polymerase chain reaction in synovial fluid from patients with Lyme arthritis. The New England journal of medicine 1994; 330: 229–34

SEITE: 1 | 2 | 3 | 4 | 5